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一株8型猪链球菌的分离鉴定及药敏试验

文章来源:网友投稿 时间:2023-08-29 16:05:04

李元亮,贺安文,刘言言,徐耀辉,唐光武,陈 益,蒋增海

(河南牧业经济学院 动物医药学院,河南 郑州 450046)

猪链球菌(Streptococcussuis,SS)是养猪业中最重要的病原菌之一,可引起猪败血症、脑膜炎、关节炎、流产及突然死亡等,它也是一种重要的人畜共患病原体,可导致人类发生败血症,甚至可能伴有败血性休克、脑膜炎等[1]。根据荚膜抗原分类的不同,可将猪链球菌分为35个血清型(1~34型和1/2型),其中1型、1/2型、2型、7型、9型和14型均可感染人,以2型致病性最强[2]。最新研究认为,猪链球菌只包含29个血清型(1~19型、21型、23~25型、27~31型、1/2型)[3],其中血清1型、1/2型、2型、7型、9型、14型及血清8型对猪致病性最强[4,5]。

近年来,全国各地猪链球病的报道较多[6-10],但关于致脑膜炎猪链球菌病的报道较少[11,12]。2020年10月底,河南省豫西某规模化猪场,60日龄阶段保育仔猪发生零星猝死,有的病猪濒死前表现为颤抖、运动失调、倒地后四肢划水状,疑似脑膜炎型链球菌病。本研究无菌采集发病仔猪的脑部组织,进行病原菌的分离鉴定及药敏试验,旨在为脑膜炎型猪链球菌病的防控与治疗提供参考依据。

1.1 病料来源

2020年10月,采集河南省豫西某规模化猪场发病保育猪的脑部组织。

1.2 主要试剂

脑心浸液肉汤购自英国OXOID公司;
5%鲜血琼脂平板购自江门市凯林贸易有限公司;
2XPCR Taq MasterMix(dye)购自加拿大ABM公司;
DL2,000 DNA Marker由TaKaRa公司提供;
核酸染料由天恩泽公司提供;
药敏片购自北京天坛药物生物技术开发公司;
快速革兰染色液购自珠海贝索生物技术有限公司。

1.3 仪器与设备

PCR扩增仪(ETC811,北京东胜生物科技公司);
气浴恒温振荡器(SHZ-82,金坛市杰瑞尔电器有限公司);
电热恒温培养箱(HP-9272,上海百典仪器设备有限公司);
立式压力蒸汽灭菌器(LDZX-50KB,上海申安医疗器械厂);
超净工作台(W-CJ-1FD,苏州安泰净化设备有限公司);
电泳仪(DYY-10C,北京市六一仪器厂);
凝胶成像分析系统(Gel DocTMXR,美国 BIO-RAD 公司);
高速离心机(5424R,德国Eppendorf公司)。

1.4 细菌的分离培养

无菌采集病变仔猪的脑部组织,直接涂片进行瑞氏染色、镜检,接种环灭菌后再次挑取脑部组织,接种于血琼脂平板,37 ℃培养24 h。挑取生长大小均匀一致的单菌落接种于血琼脂平板,37 ℃培养24 h,进一步传代纯化,挑取纯化后的单菌落,进行革兰染色、镜检,观察细菌的形态特征。

1.5 细菌的PCR鉴定

挑取分离纯化的单菌落,接种于脑心浸液肉汤中,37 ℃过夜培养,然后水煮法提取分离菌株DNA,以此DNA作为扩增模板,针对猪链球菌谷氨酸脱氢酶基因gdh,按照参考文献[13]设计合成特异性引物(P1:5′-GCAGCGTATTCTGTCAAACG-3′,P2:5′-CCATGGACAGATAAAGATGG-3′,预期扩增片段大小为689 bp),引物由生工生物工程(上海)有限公司合成。

通过PCR扩增对分离菌株进行鉴定。反应体系:2XPCR Taq MasterMix(dye)12.5 μL,P1 1 μL(10 μM),P2 1 μL(10 μM),细菌DNA 1 μL,去离子水9.5 μL。PCR扩增程序如下:94 ℃预变性3 min;
94 ℃变性30 s,51 ℃退火30 s,72 ℃延伸50 s,共30个循环;
最后72 ℃延伸5 min。

1.6 血清型鉴定和毒力因子检测

以水煮法提取分离菌株DNA为模板,按照参考文献[14]合成4组多重PCR全套引物,鉴定33个猪链球菌血清型(1~31型、33型、1/2型)。分别进行4组多重PCR扩增,用于分离菌株的血清型鉴定,回收阳性扩增条带,将PCR扩增产物送生工生物工程(上海)有限公司进行测序,测序结果与NCBI数据库中序列进行同源性比对。

按照参考文献[15]合成鉴定猪链球菌毒力因子引物(表1),采用多重PCR对分离菌株进行毒力因子检测。反应体系:2XPCR Taq MasterMix(dye)12.5 μL,上游引物各0.2 μL(10 μM),下游引物各0.2 μL(10 μM),细菌DNA 1 μL,去离子水补至25 μL。PCR扩增程序如下:94 ℃预变性3 min;
94 ℃变性1 min,58 ℃退火1 min,72 ℃延伸1 min,共30个循环;
最后72 ℃延伸7 min。所有引物均由生工生物工程(上海)有限公司合成。

1.7 药敏试验

以大肠杆菌(ATCC25922)为质控菌株,采用K-B法对分离菌株进行药敏试验。按照参考文献[16]方法,挑取纯化培养的单菌落接种于脑心浸液肉汤中,37 ℃培养12 h,用生理盐水将菌液浓度调整为0.5麦氏浊度标准(1.5×108CFU/mL);
用灭菌棉签蘸取稀释好的菌液,均匀涂抹于血琼脂平板;
将药敏纸片贴于平板上,置于37 ℃培养箱培养18~24 h后,测定抑菌圈的直径,根据说明书标准对结果进行判定[16]。

表1 猪链球菌毒力因子PCR扩增引物序列

2.1 细菌的分离培养结果

解剖颅骨可见大脑组织局部出血明显(图1),取病变的脑部组织进行瑞氏染色,油镜下可见单个、成对或者短链球菌(图2)。取病变脑部接种血琼脂平板,37 ℃培养24 h,可见白色或者灰白色、大小约1~1.5 mm、湿润、圆形菌落,呈α溶血现象。挑取分离纯化后的单菌落,革兰染色呈阳性、短链球菌(图3)。

图1 脑部出血性病变

图2 脑组织涂片,染色、镜检结果(1000×)

图3 分离菌株革兰染色结果(1000×)

2.2 细菌的PCR鉴定结果

对分离菌株进行PCR扩增,扩增产物经1%琼脂凝胶电泳后,凝胶成像系统观察结果,可见扩增条带在500~750 bp之间(图4),与预期扩增大小689 bp一致,表明分离菌株为猪链球菌。

M: DNA相对分子质量标准(DL2000);
1,2:分离菌株;
3:阴性对照

2.3 血清型鉴定和毒力因子检测

采用4组多重PCR对分离菌株进行扩增,结果表明在第一组多重PCR体系中,其扩增条带大小与8型猪链球菌的预期扩增大小268 bp一致(图5),其他3组多重PCR均无扩增条带。将PCR产物回收后测序,并与NCBI数据库中序列进行同源性比对,显示分离菌株与NCBI数据库中8型猪链球菌的同源性大于95%,确定分离菌株即8型猪链球菌。

M: DNA相对分子质量标准(DL2000);
1,2:分离菌株;
3:阴性对照

采用多重PCR对分离的8型猪链球菌进行毒力因子检测,结果显示,毒力因子sly对应预期扩增大小248 bp处出现扩增条带,而毒力因子mrp、epf分别对应预期扩增大小188bp、744 bp处均无扩增条带(图6),表明该猪链球菌的毒力因子基因型为mrp-/epf-/sly+。

2.4 药敏试验

采用K-B法对分离菌株进行药敏试验,结果表明该分离菌株对青霉素、氨苄西林、头孢噻肟、环丙沙星、复方新诺明等药物敏感,对四环素、强力霉素、红霉素耐药(表2)。根据药敏试验结果,针对本次病例可推荐青霉素、氨苄西林或者复方新诺明等进行治疗。

M: DNA相对分子质量标准(DL2000);
1:分离菌株;
2:阴性对照

表2 分离菌的药敏试验结果

猪链球菌是重要的人兽共患病原体,可引起猪脑膜炎和败血症等症状,并能通过黏膜或者伤口等传播途径感染人[17],本研究表明,8型猪链球菌可导致仔猪脑膜炎并致死。急性脑炎型链球菌病早期发现比较困难,对于猪场来说,需要每天监测猪群2~3次。早期症状表现为耳朵朝后、眼睛斜视、犬坐姿势,尽早发现,早期治疗。仔猪脑膜炎型链球菌病在临床容易与仔猪伪狂犬病、仔猪水肿病相混淆,注意鉴别诊断。

迄今,已经鉴定了大约60种猪链球菌的毒力因子,其中荚膜多糖(CPS)、溶血素(SLY)、细胞外蛋白因子(EPF)、溶菌酶释放相关蛋白(MRP)被认为是猪链球菌的主要的毒力因子[18],本研究中的猪链球菌毒力因子基因型为mrp-/epf-/sly+,Wisselink等[4]报道8型猪链球菌中有91%菌株呈mrp-/epf-毒力因子,基因型的研究结果一致。

药敏试验结果表明,8型猪链球菌对强力霉素、四环素、红霉素耐药,对青霉素类药物或磺胺类药物比较敏感,因此可采用青霉素联合地塞米松肌肉注射,或者大剂量磺胺类药物肌肉注射治疗。猪场出现病猪或者病死猪,可对同一圈舍的所有猪进行全群治疗,如可用阿莫西林饮水或者拌料,连用5~7 d。

本研究结果表明,8型猪链球菌可导致仔猪脑膜炎,且对强力霉素、四环素、红霉素等耐药,但是对头孢、青霉素或者磺胺类药物敏感,因此,此类药物可作为该病治疗的首选药物。

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